Кролик как лабораторное животное: их породы и роль в лабораторных экспериментах

Что представляет собой кролик как лабораторное животное

На протяжении многих лет человеком используется кролик как лабораторное животное, в виде мяса и получении красивого меха.

В некоторых регионов было настолько много кроликов, что их приходилось уничтожать.

Они уничтожали все на своем пути, не только растительность, поэтому их травили ядом, отстреливали, делали специальные ограждения, но все было бесполезно.

Значительно уменьшило количество этих животных заболевание миксоматоз – переносчик блохи. Кролик полезен не только в питании как диетическое мясо, но и в науке.

Как происходят научные эксперименты с участием кролей

Зверек прекрасно реагирует на вредные вещества от стафилококков, поэтому так популярен в лабораториях. При овуляции возможно изучение работы яичников. У кролей выявили аллергию на следующие модели болезней:

• Стрептококковые инфекции
• Ревматизм
• Псевдотуберкулез
• Ботулизм
• Сибирская язва
• Экспериментальные опухоли
• Сальмонеллеза

Тератогенная реакция талидомида воспроизводится на кролях благодаря схожести эмбриогенеза животного и человека. С их помощью проверяется деятельность на:

• Адреналин
• Проверка вакцин на бешенство
• Изучение различных опухолей
• Инсулин

Кролики как лабораторные животные идеальны подходят для изучения воздействия медицинских препаратов на сосуды, так как имеют изолированное ухо.

Ушная раковина кроликов устойчива к перепадам температур и не нуждается в дополнительном подогреве.

Жидкость проходит через ее сосуды, что дает возможность проявить жизнеспособность без кислорода.

Сосуды будут заметно сокращены, если в него будет добавлен адреналин.

Для выявления лихорадки применяется исключительно кролик, ведь только он может выявить примеси в растворах.

Животным свойственна высокая чувствительность к пирогенам, поэтому им могут вводить препараты в вены в большом количестве. Такие опыты подразумевают измерение базальной температуры до и после эксперимента. Если температура превысить норму, то препарат пирогенный.

Кроли-альбиносы позволяют проверить действие средств на организм. Слезы выделяются гораздо меньше, чем у похожих представителей кроликов, при этом нет пигмента. Это помогает выяснить действие медицинских факторов и средств. Зверька фиксируют, затем капается раствор и происходит мониторинг за происходящим в роговице.

В онкологии активно используется продукт фотодитазин, которое был разработан данным путем. Для определения токсичности была установлена доза, не нарушающая деятельность человеческого организма.

Последние несколько лет на них тестируется косметологическое средство, содержащее ботулинические вредные вещества.

Какие породы кроликов востребованы в лабораториях, их содержание

В ходе тестов были определены виды животных, которые идеальны для таких задач. Можно выделить такие распространенные породы:

Первый вид родом из Латинской Америки. Характеризуется небольшими габаритами, белым цветом, миролюбивым характером. В СНГ завезен в середине 20 веков. Помет составляет до 12 кролят, активно растут. Кролики выращивание в домашних условиях происходит намного быстрее при использовании бройлерной технологией.

Во времена СССР активно применяли шиншилл для опытов. Они родом из Франции, название получили из-за схожести с мехом шиншиллы. Местная порода вывелась путем скрещивания породы фландр и основной. У нас также популярны:

• Белый и серый великан
• Советский мардер
• Венский голубой
• Фландр

Было выведено несколько инбредных пород кролей, цены также и мутации с наследственной гиперхолестеринемией. Масса живого кроля составляет в среднем 3 кг. Шампань – разновидность кролика, имеющая серебристый окрас, масса рожденных кролят около 50 г, взрослой особи 2,5-4 кг.

Виварий – это территория, где находятся животные для научно-практических целей.

Условия жизни должны быть максимально естественными и благоприятными.

Несоблюдение данного правила приводит к вымиранию зверей.

Клетки в обязательном порядке должны быть чистыми, сухими, обогреваемыми и светлыми, в питание здоровым и сбалансированным.

Особое внимание уделяют профилактике болезней, так как для экспериментов необходимы исключительно здоровые зверьки.

Новых участников опытов завозят из питомников, где их разводят, преследуя эту цель. К каждому из объектов прилагается документ, подтверждающий состояние здоровья. Далее их размещают на 5 дней в клетки на карантин, за это время они успевают адаптироваться к условиям жизни.

Какие требования выдвигаются животным

Основное требование – это общее здоровье кролика. Животные не должны обладать врожденными генетическими патологиями и быть носителями вирусов и микробов. Чтобы в опытах участвовали исключительно здоровые звери, их выращивают в питомниках.

Кролики как лабораторные животные нуждаются в грамотном уходе, поэтому их организм нужно обогащать минеральными и полезными веществами. Интенсивное содержание происходит у кролей в питомниках.

Они живут недолго, так как в колониях подвержены паразитным заболеваниям, вирусам и инфекциям. В связи с этим в лабораториях работают над усовершенствованием вида лабораторного кролика. Сегодня они устойчивы к гепатиту В из-за введения генов мыши. Кролики, выращивание в домашних условиях, которых происходит значительно быстрее, характеризуются лучшим здоровьем.

Перед непосредственным проведением опыта, подопытного взвешивают, определяют пол, измеряют базальную температуру и ставят клеймо. Термометр вводят ректальным путем, кончик обрабатывается спиртом и вазелином. Материал для заражения готовится, как правило, из инфицированных тканей или органов.

Зачастую — это биожидкости больного – кровь, мокрота, плазма и т. д. Для введения определенной бактериальной культуры, ее предварительно выращивают в благоприятной среде.

После того, как кролик умер во время опыта, его тушку должны заморозить, где она храниться не более суток. Если зверек погиб во время опыта, то ученый должен провести вскрытие и выяснить причину. В итоге мертвая особь подвергается сжиганию под полным контролем ответственного за него ученого.

На видео представлен эксперимент над кроликом:

Заметили ошибку? Выделите ее и нажмите Ctrl+Enter, чтобы сообщить нам.

Кролик как лабораторное животное

Чтобы не навредить людям, все новые изобретения в области медицины и косметики испытывают на животных. Сегодня для таких исследований используют практически всех известных животных. Рассмотрим, какой вклад в развитие медицины вносят кролики, как их отбирают и каким образом получают результаты.

Кто такие лабораторные кролики

Так как кролики от природы наделены хорошей жизнестойкостью и плодовитостью, они идеально подходят для исследований.

Лабораторных кроликов используют с целью:

• облегчения диагностики разных заболеваний;
• обозначения патогенности разных штаммов микроорганизмов;
• получение новых штаммов;
• исследования действия вновь лекарств и вакцин;
• получения гемолитических сывороток и эритроцитов;
• моделирования процесса воспаления и изучения дальнейшей реакции организма;
• изготовления на основе крови и органов животных питательной среды, для выращивания возбудителей заболеваний для исследования.

Основные требования

Разведение грызунов, которые будут использоваться для экспериментов, проводят в специальных питомниках, которые содержатся при лабораториях, это позволяет получать качественный материал для исследований. Главным требованием к кроликам является полноценное здоровье. Так как в питомниках, где выращивают кролей для лабораторий, происходит интенсивное содержание, их жизнь довольно недолгая. К тому же в таких местах достаточно часто возникают разные заболевания, которые никогда не возникнут у одомашненных особей.

Какие породы чаще всего используют

Многолетние клинические испытания выявили породы кролей, которые больше всего подходят для испытаний:

• Новозеландский белый;
• Шиншилла.

Какие заболевания тестируют

Чаще всего кролей используют для тестирования следующих заболеваний:

• стрептококк;
• псевдотуберкулёз;
• ревматизм;
• сибирская язва;
• сальмонелла;
• ботулизм;
• лихорадка;
• экспериментальные опухоли.

Основные способы заражения животных

Заразить кроля можно несколькими способами. Рассмотрим их подробнее.

Внутривенный способ

Для заражения используют краевую вену уха. Место, куда будет сделан укол, тщательно дезинфицируют, а потом проводят манипуляции для набухания вены, протирая ксилолом. Во время введения препарата нужно вызвать гиперемию, для этого хвост погружают в тёплую воду.

Инфицирование через желудочно-кишечный тракт

Проводят двумя способами:

1. Животное переворачивают вниз головой, делают это для того, чтобы все внутренности передвинулись к диафрагме и во время проведения укола не были повреждены кишечник, мочевой пузырь и половые органы. Место для укола определяют следующим образом: живот делят на три части, местом прокола будет нижняя часть. Кожу дезинфицируют, берут складку, вводят иглу, потом поворачивают её под прямым углом и быстрым толчком прокалывают брюшную стенку. Этот способ позволяет сразу ввести достаточно большое количество заразного материала.
2. Смешивают микробную смесь с кормом, в этом случае достаточно сложно учесть дозу. Намного лучшие результаты получают, когда материал просто закапывают в рот. Для этого зверька фиксируют, с помощью пинцета открывают рот и медленно, капля за каплей, вводят материал, при этом кролик должен проглотить каждую каплю.

Интрацеребральное инфицирование

Такое инфицирование проводят под наркозом, с помощью прокола тонкой кости в области надглазной борозды. Важно материал вводить медленно, чтобы не привести к повышению внутричерепного давления и потере вводимого материала.

Проведение эксперимента

Перед заражением животного проводят подготовку к процедуре и готовят материал. Рассмотрим, как это делается.

Подготовка к заражению

Перед началом эксперимента животное:

1. Клеймят. Отпечаток ставят на ухе, которое предварительно обрабатывают спиртом.
2. Взвешивают. Это можно сделать на любых имеющихся весах, поместив на них кролика.
3. Определяют пол. Животное держат за уши и холку, оттягивают хвост и ощупывают область полового отверстия: если там щель, то это самка, в противном случае это самец.
4. Измеряют температуру. Для этого кончик термометра, смазанный вазелином, вводят в прямую кишку.

Материал для инфицирования животных

Бактерии, которые вводят животному, выращивают в подходящей питательной среде, соблюдая все условия. Чаще всего материалом выступают: биологические жидкости больного — кровь, плазма, мокрота, выделение из половых путей, а также части заражённых тканей и органов.

Фиксация кроликов

Подобные манипуляции проводят для того, чтобы введение биологического материала осуществлялось максимально быстро и качественно. Животное укладывают на левый бок, одной рукой держат холку, другую размещают на животе. Теперь зверька вытягивают во всю длину.

Содержание и кормление кроликов в лабораторных условиях

Чтобы получить максимально правильные результаты экспериментов, важно обеспечить зверькам полноценное содержание и кормление. Рассмотрим, что включают в себя эти требования.

Особенности содержания животных

Лабораторных кроликов содержат в научно-исследовательских учреждениях, которые называются вивариями. Здания должны быть расположены на возвышенности, в сухом месте, по близости устраивают вольеры, к тому же рядом должен располагаться земельный участок. Вся территория должна быть обнесена глухим забором.

Лабораторным животным должны быть обеспечены:

• полноценное кормление и уход;
• поддержание оптимального состояния здоровья;
• возможность удовлетворения физиологических потребностей;
• содержание в соответствующих условиях;
• ежедневный контроль содержания.

Кролики могут быть размещены индивидуально или группами, всё зависит от вида исследования. В первом случае используют боксовую систему содержания. При таком содержании каждая особь имеет отдельную комнату для жизни, доступ к сену и другому корму, а также питью.

При групповом содержании, в одной клетке содержат до 6 особей, у каждого зверька те же права, как и при индивидуальном содержании.

Из каких отделов состоит виварий

Правильно построенный виварий состоит из следующих отделов:

1. Карантинный. В него помещают вновь прибывших особей.
2. Экспериментальный. В нём находятся кроли, которые принимают непосредственное участие в опытах.
3. Изоляционный. В него помещают зараженных животных, которых ещё рано ликвидировать.
4. Манипуляционный кабинет. Тут проводят обследование зверьков перед началом эксперимента, а также берут кровь и вакцинируют.

Для обеспечения работы имеются также следующие помещения:

• биохимическая и гематологическая лаборатории;
• гистологическая лаборатория;
• помещения для хранения фармацевтических субстанций и препаратов;
• комната персонала.

Чем кормят

Для чистоты эксперимента важно правильно кормить животное не только до заражения, но и после. Рацион должен быть максимально сбалансированным.

В нём должно в обязательном порядке присутствовать:

• зерно;
• семена льна;
• морковь;
• свёкла;
• картофель;
• трава;
• пророщенный овёс.

Для пополнения уровня жидкости в организме дают воду или пастеризованное молоко. Несоблюдение этих норм приведёт к снижению иммунитета, что будет способствовать развитию нежелательных заболеваний, а также негативно сказываться на проведении эксперимента, искажать его результаты.

Что делают с умершими животными

После того, как животное погибло, его помещают в холод на сутки. Когда кролик погибает во время эксперимента, его вскрывают. После тушки сжигают.

Как видно, кролики — животные, которых используют не только для мяса или шкурок, а также в качестве домашнего животного, но и для лабораторных исследований. Как бы грустно это не звучало, они своей смертью помогают людям решить многие проблемы со здоровьем.

IX Международная студенческая научная конференция Студенческий научный форум — 2017

КРОЛИК КАК МОДЕЛЬНЫЙ ОБЪЕКТ В БИОЛОГИИ И ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ МЕДИЦИНЕ

Одним из наиболее распространенных таких модельных объектов является кролик [1-5]. Он произошел от дикого кролика (Oryctolagus cuniculus), родина которого находится в Юго-Западной Европе и Северно-Западной Африке. Кролик был известен в глубокой древности и упоминается в ряде произведений античных писателей. Разведение кроликов в неволе описал Конфуций в четвертом веке до нашей эры. Римляне, пришедшие в Испанию, называли ее «кроличьей страной». На Руси кроликов разводили еще при Ярославе Мудром. С девятнадцатого века стали широко использовать шкурки кроликов, что послужило причиной их усиленного разведения. Когда произошло одомашнивание кроликов, точно никто не знает [5]. Большое значение кроликов как мясных и шерстных объектов общеизвестно. Однако при сильном размножении они причинять большой вред полезным растениям, а также быть источником некоторых серьезных инфекционных заболеваний.

Кролик как модельный объект интересен тем, что его организм очень чувствителен к воздействию разных биологических и физических факторов. Это классическое лабораторное животное, применяемое в разных биологических исследованиях.

Кролик – некрупный зверёк с длиной тела 31…45 см, массой тела 1,3…2,5 кг. Длина его ушей составляет 6…7,2 см. Ступни кролика опушены и имеют длинные и прямые когти. Окраска верхней части его тела обычно буровато-серая, но иногда имеет рыжеватый оттенок. При этом на спине кролика заметна тёмно-бурая продольная полоса, образованная концами остевых волос. Вдоль боков тела расположена тусклая светлая полоса, заканчивающаяся в области бедра широким пятном. Брюхо имеет белый или светло-серый цвет. Цвет хвоста кролика в верхней части буро-чёрный, снизу – белый, а кончик хвоста либо чёрный, либо серый. На концах ушей различима темная окантовка. Довольно часто (в 3…5 % случаев) встречаются особи аберрантной (нетипичной) окраски, т.е. чёрные, светло-серые, белые, пегие. Сезонной смены окраски кролик практически нет. Линяют кролики 2 раза в год.

Кролик – растительноядное животное. Его зубы имеют специфическое строение. Клыков у кролика нет. Резцы и коренные зубы растут на протяжении всей его жизни, т.к. они стачиваются в процессе употребления пищи.

Пищеварительный аппарат кролика хорошо развит. Желудок у него однокамерный и имеет достаточно большой объем. Желудочный сок выделяется непрерывно, имеет повышенную кислотность и отличается большой переваривающей силой, поэтому пищу эти животные могут поедать постоянно. Пища в желудке кролика находится от 3 до 10 часов, а через весь желудочно-кишечный тракт проходит примерно в течение 72 часов. Общая длина кишечника колеблется от 4 до 6 м [3].

Нормальная температура тела у кроликов составляет 38,5…39,5 °C. Она может меняться в зависимости от температуры окружающего воздуха. Зимой температура тела кролика может понижаться до 37,5 °C, а летом повышаться до 40,5…41 °C. Пульс составляет 120..160 ударов в минуту. Нормальное число дыхательных движений – 50…60 в минуту. Общее количество крови составляет примерно 280 мл (4,5…6,7 % от массы кролика). В зависимости от возраста, кролик выделяет в сутки 180…440 мл мочи [3].

К основным биологическим особенностям кроликов относятся их скороспелость и плодовитость, отсутствие сезонности в размножении, быстрый рост молодых особей и др. Показателем плодовитости кролика может служить следующий пример. Завезенные в 1859 г. в Австралию 12 пар кроликов за 6 лет размножились до 22 млн. особей и стали национальным бедствием.

Половая зрелость у кроликов наступает к четырех-пяти месячному возрасту. По достижении этого возраста их уже можно спаривать, при этом необходимо соблюдать, чтобы живая масса кроликов крупных и средних пород была не менее 3,5 кг, а животных мелких пород – 3,2 кг. Беременность у кролика продолжается в среднем 30 дней с колебаниями от 28 до 34…35 дней [3]. Кролики рождаются слепыми и голыми, с 16 молочными зубами. На 5…7 сутки у них появляется волосяной покров длиной 5–6 мм, состоящий из остевых и направляющих волос. К 20–25 дню первичный волосяной покров достигает своего полного развития. На 10…14-й день крольчата прозревают, а на 15..20-й день они начинают выходить из гнезда и самостоятельно питаться. Молочные зубы у кроликов выпадают с 18-го дня жизни и заменяются постоянными на 20…28-й день после рождения. Масса новорожденного кролика составляет примерно 40…65 г, на 6-й день после рождения она удваивается. В месячном возрасте масса кролика увеличивается в 10 раз. Такой быстрый рост и развитие крольчат связаны с большой концентрацией питательных веществ в молоке крольчихи. В среднем в нем содержится: 10–20 % жира, 13–15 % белка, 1,8–2,1 % молочного сахара, 0,64 % кальция и 0,44 % фосфора, витаминов и других веществ [3].

Организм кролика очень чувствителен к воздействию биологических агентов, таких как микроорганизмы, вирусы, также чувствителен к воздействию физических факторов, что позволяет широко использовать кроликов как модельные объекты в медицине и биологии при изготовлении и испытании различных препаратов. Они широко используются в исследованиях в разных областях, в том числе в фармакологии и токсикологии. Из всех лабораторных животных кролики наиболее чувствительны к воздействию стафилококков. Также кролики применяются для определения активности гормональных препаратов. Кролик – классический модельный объект, используемый для изучения функций яичников. При производстве и контроле вакцин, сывороток, а также для проведения проверок на бешенство, кролики являются незаменимыми. Кролики используются как модель для изучения ряда опухолей в онкологии, например карцинома Брауна-Пирс, дегтярный рак кожи. Кроликов часто применяют в качестве модельного объекта в бактериологических и иммунологических исследованиях. Кроликов применяют для производства поликлональных антител. Изолированное ухо кролика представляет собой наилучший объект для изучения влияния фармакологически активных веществ на сосуды. Через сосуды ушной раковины кролика пропускается раствор Рингера-Локка, и они проявляют жизнедеятельность при комнатной температуре, не требуя подогрева и дополнительного снабжения кислородом, так как ушная раковина кролика приспособлена к влиянию различных температур. При добавлении сосудосуживающих и сосудорасширяющих веществ его кровеносные сосуды соответственно суживаются и расширяются. Даже если изолированное ухо кролика хранить при низкой температуре, его сосуды остаются способными реагировать на вазоактивные вещества. Если изолированное ухо высушить, то после промывания раствором Рингера-Локка оно так же сохраняет эту способность. Кролик является единственным животным, используемым в тесте на пирогенность. Этот тест – важнейший показатель безопасности инъекционных и инфузионных лекарственных препаратов. Тест проводится для выявления пирогенов. Пирогены вызывают при введении в организм лихорадочное состояние. Для этого теста кролики выбраны по следующим причинам: сверхчувствительность к пирогенам; у кроликов и человека максимально близка чувствительность к пороговой дозе пирогена эндотоксинового типа; кролики неприхотливы к условиям содержания; у кроликов легко доступные ушные вены, в которые можно много раз вводить препараты в необходимом объеме. Кролики-альбиносы также используются при исследованиях влияния лекарственных препаратов, т.к. их глаза не пигментированы (кроме того, кролики обладают меньшей интенсивностью слезоотделения по сравнению с другими животными), что позволяет легче увидеть эффект воздействия препарата. Примером может служить тест Драйзе: кролик фиксируется в станке, после чего на роговицу глаза наносят исследуемое вещество и наблюдаются изменения роговицы.

Среди примеров применения кроликов в фармакологии можно выделить доклинические испытания фотодитазина (применяется в онкологической практике).

Несмотря на запрет на тестирование косметических продуктов на животных, кролики все еще используются в лабораторных опытах при производстве препаратов ботулинического токсина, которые применяют для устранения мимических морщин.

В настоящее время ученым удалось улучшить лабораторного кролика с использованием мышиного генома. Они выделили из ДНК мыши ген, ответственный за невосприимчивость к вирусу гепатита В, и ввели его в ДНК эмбрионов кроликов, В результате были получены кролики, устойчивые к этой инфекции. Это приобретенное свойство трансгенные особи передают по наследству. Использование подобных технологий для получения линий кроликов с совершенно новыми свойствами открывает современную страницу в использовании кроликов в научных исследованиях.

В последние годы использование кроликов повсеместно уменьшается в результате движения в защиту животных, однако потребность в этих лабораторных животных по-прежнему остается высокой.

Список литературы

Синовац, М. Кролики в медико-биологических исследованиях / М. Синовац // Казахстанский фармацевтический вестник. – №1, 2011. – с. 13-15.

Балакирев, Н.А. Кролиководство // Н. А. Балакирев, Е.А. Тинаева, Н.И. Тинаев и др.; Под ред. Н. А. Балакирева. – М.: КолосС, 2007. – 237 с.

Горбунов, В.В. Кролики. Разведение. Содержание. Уход / В.В. Горбунов. – М.: Астрель, 2012 – 184 с.

Зоология. – 3-е изд., перераб. и доп. – М.: Агропромиздат, 1989. – 384 с.

Фауна. Энциклопедия животных. – М.: ОЛМА-ПРЕСС Образование, 2006. – 640 с.

Саратовская межобластная ветеринарная лаборатория

Кролик был известен в глубокой древности и упоминается в ряде произведений античных писателей. Разведение кроликов в неволе описал Конфуций в четвертом веке до нашей эры. В начале девятнадцатого века это животное было распространено на юге Европы, особенно на Пиренейском полуострове, который принято считать родиной кролика. В Испании в то время диких кроликов развелось так много, что они уничтожали посевы, а также сады и даже селения. Римляне, пришедшие в Испанию, называли ее «кроличьей страной». На Руси кроликов разводили еще при Ярославе Мудром. С девятнадцатого века стали широко использовать шкурки кроликов, что послужило причиной их усиленного разведения.

В лабораторной практике кроликов широко используют для проведения физиологических, фармакологических и биологических наблюдений. Кролики служат прекрасным биологическим объектом для оценки активности гормональных препаратов, для биологического контроля вакцин, проверки активности агглютинирующих сывороток. В связи с особенностями наступления овуляции крольчихи являются классическим объектом для изучения функций яичников.

Кроликов используют для создания моделей таких заболеваний, как экспериментальные опухоли, ревматизм, холестериновая болезнь, стафилококковые и стрептококковые инфекции, сибирская язва, листереллез, псевдотуберкулез, сальмонеллезы, столбняк, газовые раневые инфекции, ботулизм, сифилис, для проведения аллергических реакций и т. д.

В опытах на кроликах удалось воспроизвести тератогенное действие талидомида, поскольку эмбриогенез кроликов весьма близок к эмбриогенезу человека, Другие грызуны оказались мало пригодными для изучения тератогенного действия химических веществ.

Лабораторные животные

В настоящее время для экспериментальных исследований используют почти всех представителей животного мира: от простейших до высших человекообразных обезьян.

В экспериментальной хирургии для моделирования патологических состояний, для изучения физиологии и патологии органов и систем живого организма, для решения многих вопросов проблемы пересадки органов и тканей, разработки новых оперативных приемов наиболее удобным и распространенным подопытным животным является собака.

Операции на собаках широко используют для научных исследований и при обучении студентов и молодых хирургов. Эксперименты обычно ставят на собаках выносливых, неприхотливых пород, чаще всего на дворняжках. Чистопородные собаки нередко заболевают, плохо переносят оперативное вмешательство и быстро погибают при проведении хронических экспериментов. Широко применяют и других животных: кошек, кроликов, крыс, мышей и т. д. Опыты на кошках распространены в исследованиях по физиологии, токсикологии, фармакологии, для биологической стандартизации сердечных глюкозидов, воспроизведения различных инфекционных заболеваний. Кролик — широко распространенное лабораторное животное, используемое чаще всего в опытах по физиологии, фармакологии, иммунологии. Кроме того, на кроликах моделируют многие заболевания: обменные, аллергические, инфекционные, злокачественные новообразования. Мелкие лабораторные животные (крысы, мыши) наиболее широко используются в экспериментальной онкологии, поскольку у них часто развиваются некоторые виды опухолей, как спонтанно, так и искусственно вызываемые. Их применяют при биологической стандартизации гормональных и лекарственных препаратов, в исследованиях по фармакологии, биологической химии, микробиологии, иммунологии, эндокринологии, генетике.

В области физиологии высшей нервной деятельности, а также при изучении ряда проблем онкологии, иммунологии, серологии, вирусологии в последние годы все большее внимание исследователей привлекают обезьяны. В нашей стране большая программа научных исследований на различных видах обезьян проводится в Сухумском институте экспериментальной патологии и терапии АМН СССР.

В экспериментальной онкологии, неинфекционной (трансплантационной) иммунологии большое значение имеют исследования на генетически однородных линиях животных. Таких животных получают в результате длительного кровного скрещивания в пределах одной и той же потомственной линии (инбредные). В настоящее время созданы линейные животные различных видов: мыши, крысы, кролики, морские свинки и др. Известно около 100 различных линий мышей (АКР, СЗНе, А/Не, СВА и многие другие) с определенной генетической характеристикой.

Для изучения взаимодействия микробов и высокоорганизованных организмов используют безмикробных (или гнотобионтных) животных. Их извлекают из матки оперативно, путем кесарева сечения с последующим содержанием в специальных условиях, исключающих попадание микробов на кожу, в дыхательные пути и желудочно-кишечный тракт. В настоящее время удается выращивать безмикробных не только мышей и крыс, но и крупных животных: собак, свиней, обезьян.

Кролик как лабораторное животное

Как разводить кроликов для лабораторных целей?

Ввиду того что лабораторное использование кроликов чаше всего служит для обеспечения здоровья человека, при их разве­дении следует тщательно соблюдать зоогигиенические требова­ния. Кроме того, у животных не должно быть никакой видимой или скрытой болезни. Этого можно достичь в безупречно чистой среде. Поэтому весь инвентарь и оборудование для ухода за кроликами следует ежедневно чистить и часто дезин­фицировать. Необходимо обеспечить регулярное исследование кала и систематический ветеринарный контроль. Как правило, кролики получают стандартные кормовые рационы, составлен­ные из высококачественных кормов. Чтобы получить большое количество однородного подопытного материала, применяют уплотненные окролы. Для лабораторных целей наиболее при­годны кролики пород: малая шиншилла, большая шиншилла, венский голубой, венский белый и др. (за исключением альби­носов).

Мясо лучшего качества получают от кроликов мясных пород в период их максимального роста. Различают откорм молочных бройлеров и бройлерный откорм.

Для откорма молочных бройлеров используют типич­ные мясные породы кроликов — новозеландский белый, кали­форнийский, бургундский и их помеси первого поколения. Применяется размножение с тремя гнездами. Отсаживают от матки крольчат в возрасте 8—10 недель, когда они весят 2—2,5 кг, и дают им комбикорма. Вскоре их реализуют на мясо. Ежегодно от одной самки можно получить 24 крольчонка обшей массой 48 кг.

Для бройлерного откорма пригодны все мясные породы кроликов — новозеландский белый, калифорнийский, нитранский, бургундский, французский серебристый, чешский альбин и их помеси. Разведение можно организовать таким образом, чтобы при условии правильного кормления получать 6 окролов в год. Крольчат отнимают в возрасте 6 недель. Кормят их комбикормами до получения живой массы 2,5—3,6 кг, которой они достигают в возрасте 3,5—4 месяцев. От одной самки получают 48 крольчат общей живой массой 120— 173 кг.

Ветеринарная медицина

Кролики — особенности физиологии и лечения

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ

Кролики — весьма приятные домашние животные, и их все чаще и чаще содержат в домах как членов семьи. Владельцы кроликов весьма требовательны в плане ветеринарной безопасности своих питомцев. Болезни комнатных кроликов отличаются от болезней у хозяйственных или лабораторных кроликов.

В поддержании крепкого здоровья, как и в случаях многих других экзотических животных, особое значение имеют правильное питание и хороший уход.

Заболевания зубов у кроликов является наиболее частой причиной обращения к ветеринару. Они могут возникать из-за нарушения баланса питательных веществ в корме и при прогрессировании часто приводят к абсцессам.

Также часто встречаются заболевания, связанные с отсутствием клетчатки в корме, ожирением и артритами, например позвоночные спондилиты. При блокировании носослезного протока разросшимися корнями зубов возникают офтальмологические проблемы, такие как эпифора или дакроцистит.

Из-за сниженной моторики желудочно-кишечного тракта в желудке образуются трихобензоары (комки шерсти). Это заболевание лучше лечить медикаментозным путем, а не хирургически. У крольчих в среднем возрасте часто возникают аденокарциномы матки. Это заболевание можно предупредить с помощью обычного удаления матки и яичников.

ВВЕДЕНИЕ

В течение последних десяти лет сильно выросла популярность кроликов как комнатных животных, и теперь их часто содержат в домах не только дети, но и взрослые. Более понятны стали физиологические и поведенческие потребности этих животных, вследствие чего хозяева стали внимательнее наблюдать за ними и раньше обращаться к ветеринару при возникновении проблем. Холощение и кастрирование кроликов стали обычными, и владельцы не жалеют средств на диагностические тесты и интенсивное лечение. Все более проявляется тенденция к содержанию кроликов в комнатных условиях как членов семьи, но даже те из них, которые содержатся на улицах, получают больше свободы и физических нагрузок, а не сидят все время в клетках, как раньше. Спектр болезней, поражающих живущих в домах кроликов, сильно отличается от обнаруживаемых в колониях хозяйственных или лабораторных животных. Домашних кроликов обычно содержат поодиночке или парами, они не размножаются и живут много лет. Хозяйственных и лабораторных кроликов содержат в интенсивных условиях, они живут недолго и проходят цикл роста, выкармливания крольчат или размножения. Вследствие этого, в колониях хозяйственных или лабораторных кроликов наблюдаются заболевания инфекционные, паразитарные и органов размножения, которые практически не встречаются у домашних животных. В то же время, у домашних кроликов наблюдаются болезни, связанные с особенностями питания, содержания и большой продолжительностью жизни.

ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ И ПОВЕДЕНЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ КРОЛИКОВ

Знать эти характеристики важно для понимания заболеваний, которые могут возникнуть.

Кролик активно поглощает кальций из травы. Количество поглощаемого кальция скорее связано с его содержанием в корме, а не с потребностями животного. Общее содержание кальция в сыворотке крови у кролика выше, чем у других видов животных, что также обусловлено особенностями питания. Избыток кальция у кролика выводится почками в виде карбоната кальция с щелочной мочой. Карбонат кальция можно увидеть в виде мутных включений в моче, иногда они видны в виде плотных образований на рентгенограммах брюшной полости. Странный цвет мочи и наличие в ней включений из карбоната кальция придают моче кролика необычный вид (Рисунок 1), часто тревожащий владельцев. В исключительных случаях карбонат кальция в моче может выпадать в осадок, что предрасполагает животных к циститу. В почках или мочевом пузыре иногда возникают камни. В таких случаях для лечения полезными оказываются снижение количества кальция в корме и увеличение потребления воды.

Пищеварительная система кролика приспособлена к корму, содержащему большое количество клетчатки. Зубы у этих животных растут постоянно и сохраняют нужную форму только вследствие постоянного стачивания. Фекалии кроликов бывают двух типов. Большие не усваиваемые фрагменты клетчатки быстро проходят через пищеварительный тракт и выделяются в виде твердого сухого помета (используемого дикими кроликами для маркирования своей территории). Меньшие фрагменты и усвояемая часть корма накапливаются в большой слепой кишке и подвергаются там бактериальной ферментации с высвобождением летучих жирных кислот, всасывающихся в кровь как питательные вещества.

В результате бактериальной ферментации содержимое слепой кишки обогащается аминокислотами, витаминами, бактериями и другими микроорганизмами. Это содержимое периодически выбрасывается через анальное отверстие в виде мягких гранул, называемых цекотрофами, и поедается кроликом для получения питательных веществ. Этот процесс цекотрофии позволяет кролику переваривать корм с высоким содержанием клетчатки, не сохраняя в желудочно-кишечном тракте большие объемы съеденного корма. В то же время, ускоренное проведение через этот тракт неперевариваемой клетчатки улучшает его моторику и предупреждает его заболевания. Цекотрофы состоят из мягкой пастообразной массы с сильным запахом, которая, если она не съедена, может размазываться по шерсти вокруг анального отверстия в виде неприятного вида фекальных образований, ошибочно принимаемых владельцами за признаки диареи (поноса). Содержания белков и клетчатки в корме оказывает влияние на склонность кроликов к потреблению цекотрофов и их консистенцию. Все нарушения, снижающие гибкость кролика и его возможность дотянуться до анального отверстия (спондилиты, ожирение, содержание в тесной клетке), могут предотвратить нормальное поедание цекотрофов. Это же может наблюдаться и при заболевании зубов. Послеоперационные повязки (типа пояса Елизаветы) не только предупреждают растравливание раны, но и прекращают цекотрофию, что лишает кролика некоторых незаменимых питательных веществ. В Таблице 1 суммированы некоторые причины накопления фекалий вблизи анального отверстия у кроликов.

Уход за шерстью

Здоровые кролики тщательно чистятся. Животные, содержащиеся группами, чистят друг друга, особенно вокруг головы. Иногда можно наблюдать, как кролик-доминант выщипывает шерсть у подчиненных, оставляя проплешины. Это явление называется «бритьем». Крольчихи, беременные и в состоянии ложной беременности, выщипывают свой пух, чтобы выстлать гнездо будущему потомству. В нормальных условиях постоянная чистка позволяет кроликам поддерживать кожу и шерсть в здоровом состоянии и способствует удалению клещей, таких как Leporacus gibbus и Cheyletiella parasitovorax, которых находят в мехе у здоровых животных. При клинических состояниях, нарушающих нормальную цекотрофию, нарушается и чистка тела кроликов в труднодоступных местах, таких как промежность, основание хвоста или шеи со стороны спины. Кроме того, развивающиеся при отсутствии чистки хейлитиллозы, инфекции в складках промежности часто являются следствием других заболеваний, таких как болезни зубов, спондилезы или ожирение, также мешающих кролику нормально чиститься. Для эффективного симптоматического лечения кроликов от эктопаразитов следует применять ивермектин.

Гематологические и биохимические особенности

Анализ крови у комнатного кролика весьма информативен в плане оценки степени его гидратации и функции печени и почек. Почечная недостаточность легко может быть дифференцирована от других причин анорексии и потери веса по значениям содержания мочевины и креатинина в сыворотке крови. Кровь у кроликов можно забирать из головных, яремных и краевых ушных вен. Заболевания зубов могут помешать кроликам вылизываться и поедать цекотрофы. Кролики не могут достать до анального отверстия и употреблять цекотрофы из-за спондилита позвоночника или другой формы артрита. Ожирение. Многие ожиревшие кролики не могут достать до своего хвоста и поэтому вынуждены потреблять неподходящий корм. При недостаточном содержании клетчатки в корме снижаются вкусовые качества цекотрофов и ухудшается их консистенция Они становятся более мягкими и липкими, чем при рационе с нормальным содержанием клетчатки, из-за чего часто налипают на мех вокруг ануса. Корма с высоким содержанием белка снижают вкусовые качества цекотрофов Рационы, разработанные для промышленно выращиваемых кроликов, отличаются повышенным содержанием белка, что делает их малоприемлемыми для неразмножающихся домашних кроликов. Изменения в кормлении, например, введение сочных кормов (салата или фруктов), могут привести к выделению излишне мягких цекотрофов. Новые корма следует вводить постепенно. Многие болезненные или ослабляющие животное состояния, например, пододерматиты, почечные заболевания или опухоли, могут проявляться в том, что кролик перестает чиститься и удалять загрязнения в аногенитальной области.

Гематологические сдвиги при инфицировании у кроликов отличаются от таковых у других домашних животных. Так, лейкоцитоз редко встречается даже при наличии активной инфекции. Однако развивается анемия и меняется лейкоцитарная формула, что и служит признаком заболевания. Типичным ответом инфицирования являются слабая нейтрофилия и лимфопения Соотношение содержания нейтрофилов и лимфоцитов в крови у здорового взрослого кролика должно составлять приблизительно 1 , при многих заболеваниях оно нарастает.

Нейтрофилы кролика имеют цитоплазму, окрашиваемую в розовый цвет, и содержат редкие крупные гранулы Окрашивание этих клеток по эозинофильному типу дало ряду исследователей основание отнести их к гетерофилам, однако другие продолжают использовать термин нейтрофилы. Изредка используются также термины псевдоэозинофил или даже ацидофил Эритроциты кролика сильно варьируют по размеру, поэтому анизоцитоз и полихромазия в мазках крови кроликов — норма .

При многих гнойно-инфекционных заболеваниях у кроликов из гноя выделяется бактерия Pasteurella multocida Могут присутствовать там и другие бактерии В то же время, Р multocida выделялась и из носовой полости здоровых кроликов (9) Степень патогенности этой бактерии определяется большим количеством факторов, включая бактериальный серотип, устойчивость хозяина, наличие стресса или другого заболевания. В условиях интенсивного разведения и частых контактов с другими кроликами возникновение пастереллеза является серьезной проблемой при содержании кроликов для продажи или в лабораториях Следствием пастереллеза являются риниты, пневмонии, воспаления среднего уха, септицемии и абсцессы на разных участках тела, включая часть половых путей Хотя Р. multocida может быть выделена из содержимого абсцессов или обнаружена в носовом отделяемом комнатных кроликов, содержащихся поодиночке или парами, эта бактерия редко является первичной причиной болезни, обычно это — вторичная инфекция в месте, пораженном по другой причине.

Антибиотикотерапия у кроликов

Взятие крови у лабораторных животных и ее обработка

Небольшое количество крови получают у кроликов и мор­ских свинок из вен уха, у мышей и крыс—из вен хвоста, а большие количества — из сердца. В особых случаях прибега­ют к полному, или тотальному, обескровливанию, после кото­рого животное погибает.

Для пункции сердца животных фиксируют к доске брюш­ком кверху. Шерсть в области груди тщательно выстригают, кожу обрабатывают спиртовым раствором йода и после этого приступают к проколу, который в зависимости от вида жи­вотного имеет некоторые различия.

Пункция сердца кроликов. Определяют II пальцем, обра­ботанным спиртом и смазанным спиртовым раствором йода, сердечный толчок, т. е. точку наиболее сильно выраженной пульсации сердца. Обычно она прощупывается в третьем межреберье. Прокол грудной клетки делают в области сер­дечного толчка на расстоянии 2—4 мм от левого края гру­дины; иглу ведут в направлении к средней линии на глубину 2—2,5 см. При попадании иглы в полость сердца рука, в ко­торой находится шприц, начинает ощущать ритмичные толч­ки, связанные с пульсацией сердца и приподнимающие иглу. Поршень шприца легко выдвигается наружу и в цилиндре его тотчас появляется кровь. Взятие крови должно произво­диться по возможности быстрее во избежание ее свертыва­ния. По этой же причине шприц и иглу рекомендуется промы­вать перед опытом стерильным раствором цитрата или оксалата натрия. Взяв необходимое количество крови, быстрым движением, без рывка, вынимают иглу и на месте укола на­кладывают ватный тампон, пропитанный спиртовым раство­ром йода. Животному подкожно вводят подогретый до тем­пературы тела стерильный изотонический раствор хлорида натрия или глюкозу в количестве, равном двойному объему взятой крови. Пункцией сердца можно получить у кролика 25—30 мл крови.

Пункция сердца у морских свинок. Кончиками III—IV пальцев левой руки нащупывают сердечный толчок, в на­правлении которого вертикально на глубину 1,5—2 см вка­тывают иглу, отступя на 1—2 мм от левого края грудины. У морских свинок можно получить таким образом 10—12 мл крови.

Пункция сердца у крыс. Как и в предыдущих случаях, пальпаторно определяют место сердечного толчка. На 1 см выше от установленной точки и на 1—2 мм левее от края гру­дины делают прокол на глубину 1,5—2 см, держа иглу вер­тикально. Одномоментно у крыс можно получить 6—8 мл крови.

Тотальное обескровливание кролика. Вскрывают одну из сонных артерий, расположенных по обеим сторонам трахеи. Для получения стерильной крови руки оперируемого должны быть тщательно вымыты и обработаны спиртом или спирто­вым раствором йода, все инструменты предварительно необ­ходимо простерилизовать.

Подготовленного для кровопускания кролика привязывают станку брюшком кверху, фиксируя голову кольцом к штативу. Шерсть на шее тщательно выстригают, кожу дезинфи­цируют. К носу животного прикладывают кусочек ваты, смо­ченной эфиром. После того как наступит состояние наркоза, скальпелем делают разрез по средней линии шеи и разводят края раны пинцетом. Сонные артерии проходят по бокам тра­хеи в яремном желобке между веной и нервом. Сверху артерия прикрыта грудино-подъязычной и грудино-щитовидной мышцами. Поэтому для обнаружения нервно-сосудистого пучка эти мышцы разделяют тупым концом скальпеля или браншами пинцета. Артерию освобождают от окружающей соединительной ткани и подводят под нее две лигатуры. Ближай­шую к головке лигатуру завязывают двойным узлом, позади второй лигатуры на расстоянии 0,3—0,5 см накладывают пе­ан. Между лигатурой и пеаном маленькими остроконечными ножницами делают продольный разрез сосуда длиной не бо­лее 1,5—2 мм, вставляя в него канюлю (стеклянную трубочку с оттянутым капилляром, кончик которой скошен и хорошо оплавлен). Кончик вставленной канюли укрепляют второй лигатурой. После этого под резиновую трубку, надетую на расширенную часть канюли, подставляют пробирку или фла­кон и снимают пеан с артерии, чтобы кровь могла вытекать свободно. Обескровливание морских свинок про­изводят так же, как и кроликов.

Взятие крови из вены уха кролика. Для получения крови из краевой вены нужно, прежде всего, вызвать гиперемию уха, потирая его ладонями рук и слегка ударяя кончиками паль­цев. Затем вдоль наружного края уха удаляют пушок и про­тирают ватой, увлажненной 70% спиртом. Если в результате всех перечисленных процедур сосуды не инъецируются, ухо смазывают ксилолом или толуолом. После того как сосуды набухнут и четко обозначатся на поверхности ушной ракови­ны, наружную поверхность ее покрывают тонким слоем жид­кого парафина (во избежание быстрого свертывания крови) и делают прокол вены.

Для получения небольшого количества крови (менее 1 мл) прокалывают одну из небольших периферических ветвей, а для получения больших объемов крови (5—10 мл) вскрывают краевую вену уха. С этой целью иглу шприца вводят в вену почти параллельно поверхности уха, чтобы не повредить про­тивоположную стенку вены. При проколе вены иглой шприца кровь, как правило, выходит отдельными каплями с боль­шими интервалами, и кровотечение прекращается быстро. Для того, чтобы вызвать обильное кровотечение, нужно сде­лать ранку с рваными краями. С этой целью пользуются об­ломком тонкого капилляра пастеровской пипетки. При таком способе прокола из уха кролика получают до 30 мл крови. После взятия крови к проколу вены прикладывают на 2—3 минуты кусочек сухой стерильной ваты, не нажимая сильно на стенку сосуда, так как при этом кровотечение может усилиться. Если кровотечение долго не прекращается, хорошие ре­зультаты дает нанесение на ранку нескольких капель пе­рекиси водорода.

Взятие крови из вен у морских свинок, крыс и мышей. У морских свинок кровь в количестве 0,3—0,5 мл получают после нанесения насечек на край уха или прокола мягких по­душек лапы.

У белых крыс и мышей для получения 1—3 капель кро­ви приходится прибегать к ампутации кончика хвоста пос­ле продолжительного прогревания его в воде температуры 45—50°С или протирания ксилолом. Взяв кровь, рану прижигают перекисью водорода.

Есть способ, позволяющий получить у крыс 0,5—1 мл крови из венозного сплетения, ле­жащего в орбите, позади глазного яблока. Взятие крови про­изводят стеклянной пипеткой с оттянутым капилляром (на­ружный диаметр 0,6 мл), острие которого сточено под уг­лом 45°.

Животное берут I и II пальцами левой руки со стороны спины за шею и слегка сдавливают с боков, вызывая легкое выпячивание глаз. Вращательным движением пипетки дела­ют прокол конъюнктивального мешка в медиальном углу гла­за между глазным яблоком и орбитой. После прокола пипет­ку ведут в направлении гортани на глубину 4—5 мм. Попа­дание в венозное сплетение сопровождается заполнением ка­пилляра пипетки кровью.

Получение дефибринированной крови. Кровь животного сливают в стерильную колбу со стеклянными бу­сами и непрерывно в течение 10—15 мин встряхивают. В ре­зультате встряхивания находящийся в крови фибрин выпада­ет в осадок, обволакивая бусы, а дефибринированная кровь, слитая в другую колбу или пробирку, утрачивает способ­ность свертываться.

Приготовление взвеси эритроцитов. Для ос­вобождения от пленок фибрина дефибринированную кровь фильтруют через трехслойный марлевый фильтр. Фильтрат наливают в центрифужные пробирки и центрифугируют при 2000—3000 об./мин. в течение 10—15 минут. Эритроциты оседают на дно пробирки, а прозрачная, слегка желтоватого цвета плазма образует надосадочный слой. После центрифугирова­ния уровень жидкости в пробирке отмечают карандашом, от­сасывают плазму пастеровской пипеткой, эритроциты промы­вают, доливая до метки стерильный изотонический раствор хлорида натрия, и вновь центрифугируют. Промывание эрит­роцитов с добавлением свежего раствора производят 2—3 разa, чтобы последняя порция промывной жидкости была бес­цветна.

Из промытых эритроцитов готовят 3% или 5% взвесь, прибавляя к 3—5 мл эритроцитов соответственно 97—95 мл изо­тонического раствора хлорида натрия (для получения мень­ших количеств взвеси объемы обоих ингредиентов уменьша­ют в одинаковое число раз).

Взвесь эритроцитов можно хранить в холодильнике при температуре 3—4°С в течение 5—6 дней.

Приготовление сыворотки крови. Кровь, со­бранную в стерильную пробирку, закрывают ватно-марлевой пробкой, ставят на 20—30 мин в термостат или водяную ба­ню, отрегулированную на 37°С, так как в тепле кровь свер­тывается быстрее и лучше. Во время свертывания сгусток крови обычно прилипает к стенкам пробирки. Поэтому после взятия пробирок из термостата сгусток отделяют от стенок пробирки круговым движением капилляра стерильной пасте­ровской пипетки или стеклянной стерильной палочкой.

После отделения сгустка сыворотку ставят в холодильник при температуре 3—4°С. В течение 3—4 ч сыворотка обычно отделяется полностью, и ее можно отсосать стерильной пасте­ровской пипеткой. Для того чтобы во время отсасывания со­держимое пробирки было хорошо видно, пастеровскую пи­петку соединяют со стеклянной трубкой — «мундштуком» (ре­зиновая трубка длиной 20—25 см). При отсасывании кончик пипетки не должен соприкасаться со сгустком крови, чтобы в сыворотку не попали эритроциты.

Окрашенную в розовый цвет сыворотку центрифугируют при 2000—3000 об./мин. в течение 10—15 мин для осаждения форменных элементов крови.

При взятии крови вскоре после кормления животных, а также при повторных кровопусканиях с короткими интерва­лами возникает иногда липемия, т. е. появление избытка жи­ровых веществ в крови. Сыворотки, получаемые во время липемии, бывают мутные (хилезные), иногда опалесцирующие, и это очень затрудняет чтение диагностических реакций, осо­бенно реакции преципитации. Во избежание получения мут­ных сывороток кровь у животных берут натощак. Просветле­ние липемической плазмы наступает также при введении в кровеносное русло животного гепарина, способствующего по­вышению концентрации в крови фермента, называемого фак­тором просветления. С этой целью кроликам весом 2—2,5 кг в краевую вену уха вводят за 1—1,5 ч до обескровливания 60 мг гепарина.

Форменные элементы из крови удаляют центрифугирова­нием. В слитой с осадка плазме через короткое время после центрифугирования образуется сгусток фибрина, который уп­лотняется при перемешивании крови стеклянной палочкой. Затем этот сгусток удаляют. В некоторых случаях фибрин из плазмы выпадает не полностью. Для удаления остатков фиб­рина и выявления полноты его удаления к сыворотке при­бавляют несколько капель тромбина. Освобожденную от фиб­рина сыворотку фильтруют через асбестовые фильтры. Полу­ченная таким способом сыворотка совершенно прозрачна и не имеет признаков опалесценции.

Приготовление цитратной крови. Полученную из сердца или вены кровь сливают в пробирку с 5% раство­ром цитрата натрия (10 мл крови, 1 мл цитрата натрия). Цитратная кровь не свертывается.

Приготовление плазмы крови. Цитратную кровь ставят на 18—20 ч в холодильник или подвергают центрифу­гированию. В результате над осадком эритроцитов образуется прозрачный слой жидкости желтоватого цвета—плазмы.

Дата добавления: 2014-12-06 ; просмотров: 7396 ; ЗАКАЗАТЬ НАПИСАНИЕ РАБОТЫ